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植物组织培养(plant tissue culture)是指在无菌和人工控制的环境条件下，利用人工培养基，对植物的胚胎、器官、组织、细胞、原生质体等进行离体培养，使其再生发育成完整植株的过程。通过组织培养得到无性繁殖的植株已有研究，笔者系统地简述工业(汉麻)组织培养的研究进展，现报道如下。高分一号

1的基因型研究

组织培养能否成功，基因型的选择是非常重要的。不同物种和同一物种的不同基因型，其形态发生能力往往有巨大差异。但值得注意的是，遗传上和亲缘上越相近的培养材料，其形态发生的条件要求也越类似[10]。Feeney M.等应用4个不同的基因型UnikoB、Kompolti、Anka和Felina34进行组织培养和农杆菌介导[11]。SlusarkiewiczJaraina A.等以5个品种(Silesia、Fibrimon24、Novosadska、Juso15和Fedrina74为试验材料进行愈伤组织诱导及植株再生，在所有类型外植体的分化率中，品种Fibrimon24的分化率达到61.92%。

2消毒研究

消毒剂的选择以及消毒时间的确定是组织培养有效进行的关键。刘以福等将用浓度0.1%升汞水浸泡30 min，接种到琼脂培养基上，萌发获得无菌苗[9]。张利国等采用浓度10%次氯酸钠作为消毒剂，进行3次处理，消毒时间为18、21和24 min，发芽率在浓度10%次氯酸钠消毒18 min后达到最高，且没有造成污染。

3的生理年龄研究

外植体的取材时间也是影响组培成功的关键因素，一般情况下，幼苗的生活能力和再生能力都比较好。刘以福等以一代及优良品种(系)幼苗的真叶长到1～2对的中上部叶茎作为外植体。尹品训等在小苗长至5～10 cm高时，取其茎尖进行处理[8]。

RichezDumanois C.等研究表明，对2种纤维用植株而言，外植体的选择非常重要[14]。在已报道的组织培养相关文献中，主要选择的外植体有：叶子、下胚轴及茎尖等。张利国等选用新品种龙一号的下胚轴进行组织培养。尹品训等以工业品种云麻1号的带节茎段为外植体进行了离体培养与快速繁殖研究。Loh W.H.T.等以的茎和叶进行愈伤组织的诱导[16]。

5培养基研究

培养基是外植体赖以生长的物质基础，不同组分的培养基和不同比例激素的添加都会产生不同的效果。另外，培养基的pH值对组织培养也有一定的影响，pH值为5.8时，分化诱导率均最大。笔者对再生体系的培养基进行了统计。

另外，麻类作物组织培养在麻类科研工作人员多年的努力下，在快速繁殖、花药培养、原生质体培养、体细胞胚发生和器官发生等研究方面取得了较好的进展，在遗传转化的研究上也取得了一定的成效，可以为组织培养的研究提供一些依据。

6小结及展望

综上所述，离体培养过程中，无菌苗和外植体的获得是关键，选择适宜的消毒剂和处理时间，既有良好的除菌效果，大大降低了初始污染率，又获得了生长状态更好的实生苗。由于植物细胞的全能性，植物体的任何部分均能够诱导成苗，但大量研究资料表明，同一植物的不同器官甚至同一器官的不同部位其诱导与分化能力都大不相同[22]。所以，适宜外植体的确定将影响组织培养的有效进行。培养基是植物组织培养的物质基础，建立一项新的培养体系时，选择合适的培养基是组织培养成功的前提。培养基统计结果发现：MS培养基是应用最广泛的培养基。在其他麻类作物的研究中所用基本培养基有的有所不同，这在以后组织培养中可以进行借鉴。植物生长调节剂可以调节培养物的生长发育进程、分化方向和器官发生，具有重要的作用。

目前，转基因技术已成为基因功能验证的重要方法之一，主要在改善植物品质、提高植物抗性以及利用植物作为生物反应器等方面进行了大量的研究，并取得了很好的成就。的转基因技术迄今为止在还未获成功，所以熟知组织培养的研究进展将为今后工业的研究提供理论依据。

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